Фбс своими руками: Фундаментные блоки своими руками

Содержание

Фундаментные блоки своими руками | Фундамент для Дома

Первый вопрос, который задает себе каждый человек решивший сделать фундаментальные блоки сам — это из чего же их делать. Технология производства фундаментальных блоков подразумевает строительство небольшого здания, будь то гараж или небольшой дачный домик. Чтобы сделать фундаментальные блоки своими руками вам понадобится:

Форма для отливки блоков:
Гранитный щебень;
Портландцемент высокого качества;
Песок кварцевый;
Оборудование для производства фундаментальных блоков – виброустановка погружная.

Изготовление формы для блоков ФБС своими руками

Самым затратным из всех этапов является возведение фундамента и именно на этом этапе можно приложить руку и изготовить фундаментальные блоки своими руками.
Чтобы производство фундаментальных блоков прошло правильно необходимо соблюдать порядок действий. Первое что нужно сделать — это определиться с размерами. Можно смастерить опалубку, которая имеет размер стандартного блока (2,4х0,6х0,4м).

Заливать фундаментальные блоки в форму из опалубки и переставлять ее дальше, таким образом действовать до конца заливки фундамента.

Опалубка получается многоразовая и чтобы не использовать автокран для доставки и монтажа, производство блоков ФБС нужно проводить непосредственно на месте размеченного фундамента.

Из чего сделать блоки ФБС?

Для изготовления формы для фундаментальных блоков нужно взять многослойную фанеру OSB. Ее ширина должна соответствовать высоте блоков, а длина должна составлять более чем 20 см, чем длина блоков. Изготавливая формы для фундаментальных блоков фанеру необходимо зачистить и окрасить водостойкой краской. Производство фундаментальных блоков подразумевает использование влагоустойчивой фанеры, которая не деформируется при попадании на нее воды.

Фанеру окрашивают с обеих сторон и после ее высыхания от краев делают поперечные прорези глубиной около 5 мм с помощью ножовки. Далее между краев фанеры и прорезью нужно просверлить отверстие для болтов, стяжки диаметром 14 мм.

Из подготовленного стального листа вырезаем две прямоугольные части, стороны которых соответствуют длине и ширине блоков ФБС.

После всех подготовительных работ можно приступать к сборке формы для фундаментальных блоков. Для этого все части склыдываются на ровную поверхность, фанера покрашенными сторонами укладывается вовнутрь. В пропилы нужно вставить металлические листы, а в отверстия стержни. Рядом со стяжкой на внутренней стороне фанеры фиксируем деревянные вставки для установки ширины блока. Затем затягиваем гайки и наша форма готова. Помните, что форма для фундаментальных блоков должна быть разборная, иначе вы можете повредить изделие при вынимании его из опалубки.

Готовим раствор для блоков

Изготовление блоков ФБС требует приготовление раствора. Для этого берем щебенку (4 части), крупный песок (2 части), цемент (1 часть) и воду.

Чтобы фундаментальные блоки своими руками получились прочными, раствор после перемешивания должен остаться вязким. Консистенция регулируется с помощью воды.

Перед заливкой блоков в форму можно поставить деревянные бруски, которые при застывании образуют пазы для последующей укладки. Это поможет сделать сцепку между ними прочнее. Что упростит укладывание блоков в фундамент. Заливку смеси в форму осуществляем на ровной поверхности с применением строительного уровня.

Для того чтобы изделие не потрескалось во время высыхания его накрывают пленкой и в течение двух дней поливают водой. Перед применением блоки должны хорошо просохнуть в течение трех недель. За это время они, достигнут нужной прочности и твердости. Обязательно следите, чтобы на блоки не попадали солнечные лучи.

После полного застывания опалубку можно разбирать. Как видим, изготовление блоков ФБС процесс длительный и трудоемкий, но не сложный.

Уплотнение фундаментальных блоков своими руками

Укладывать бетон в форму нужно так чтобы не было пустот, а углы были заполнены равномерно. После заливки бетон нужно хорошо уплотнить. Для этого берем небольшую лопаточку и втыкаем ее в раствор. Таким образом, бетон утрамбуется и усядется в форме. Чтобы процесс производства пошел быстрее можно сделать несколько форм.

Фундаментные блоки своими руками

15.03.2014 08:27

Если бюджет на строительство ограничен или просто хочется сэкономить, некоторые этапы возведения здания придётся выполнять собственноручно. Поскольку затраты на сооружение фундамента составляют примерно 1/5 стоимости всей постройки, а сам процесс достаточно прост в реализации, можно изготовить фундаментные блоки своими руками.

Работы выполняются в следующем порядке. Сначала необходимо определиться с размерами. Поскольку решено, насколько это возможно, обойтись собственными силами, и с максимальной экономией пиломатериалов.

Достаточно соорудить опалубку размером со стандартный блок ФБС вот его размеры 2,4 х 0,6 х 0,4 м. и постепенно после заливки очередного блока переставлять опалубку дальше, до окончательной заливки фундамента, таким образом наша опалубка будет использоваться много раз.

При таком подходе кроме экономии пиломатериалов мы также сэкономим на использовании автотранспорта для доставки готовых блоков и автокрана для их монтажа. Что бы изготовленные блоки не нужно было перемещать, установку опалубки и заливку бетона необходимо производить на месте размеченного фундамента.

Для создания опалубки следует взять фанеру OSB, ширина которой равна высоте блоков, а длина – на 20 см больше их длины. Одна сторона фанеры зачищается и окрашивается водостойкой краской.

После высыхания на окрашенной стороне обеих фанер в 10 см от краёв ножовкой делаются поперечные пропилы глубиной примерно в 5 мм.

Расстояние между ними на каждой заготовке из фанер должно быть равным длине блоков. Теперь между краем каждой фанеры и пропилом, примерно посередине, сверлятся отверстия диаметром 14 мм – для болтов будущей стяжки.

Из стального листа толщиной 1 мм вырезаются два прямоугольных куска: одна сторона каждого равняется высоте блоков, другая – ширине.

Актуальные цены 2023 года от поставщиков

Они послужат в качестве торцевых вставок опалубки, для них и делались пропилы, так же можно использовать фанеру или обрезную доску.

Осталось приготовить несколько стальных стержней диаметром 12 мм и длиной, на 10 см превосходящей ширину блоков, с резьбой на концах, – и можно приступать к сборке.

Заготовки из фанеры укладываются на ровную поверхность параллельно друг другу окрашенной стороной вовнутрь. В пропилы вставляются металлические торцы, а в круглые отверстия – подготовленные стержни.

Прежде чем стянуть конструкцию гайками, с внутренней стороны фанеры, рядом со стяжкой, следует установить деревянные проставки для фиксации ширины блока.

Теперь гайки затягиваются и опалубка готова.

Для приготовления раствора 1 часть цемента соединяется с 2 частями песка и 4 частями гравия. Для того, чтобы блоки получились прочными, смесь после тщательного перемешивания должна остаться достаточно вязкой.

Нужная консистенция достигается регулировкой подачи воды. Перед заливкой раствора с внутренней стороны торцевых стенок, посередине, можно установить деревянные бруски. Впоследствии они удаляются и остаются пазы, которые при укладке готовых блоков заполняются раствором.

Это усиливает сцепку между ними, отчего фундамент становится прочнее. Теперь форма заполняется смесью и утрамбовывается. Во избежание растрескивания при высыхании конструкция накрывается плёнкой и в течение двух дней регулярно поливается водой, после чего опалубку можно разобрать.

Видео: Опалубка своими руками

Найти мастера

—

Что такое эмбриональная бычья сыворотка | Thermo Fisher Scientific

Если вы спросите: «Что такое фетальная бычья сыворотка и для чего она используется?» вы не одиноки. Фетальная бычья сыворотка (ФБС) представляет собой жидкую фракцию, оставшуюся после коагуляции крови, взятой у бычьего плода. ¹ В результате центрифугирования удаляются клетки, коагуляционный фибриноген и белки для получения сыворотки.

Несмотря на то, что из эмбриональной телячьей сыворотки удалены клетки и факторы свертывания, остается более тысячи компонентов, способствующих росту клеток, в том числе:

Факторы прикрепления
Факторы роста
Гормоны
Липиды
Факторы распространения
Сахара
Транспортные белки

9 Витамины

0 Категории бычьей сыворотки

Бычья сыворотка классифицируется в соответствии с возрастом животного, у которого была взята кровь: ²

Фетальная бычья сыворотка получена из плодов.
Сыворотка новорожденного крупного рогатого скота получают от телят моложе двадцати дней.
Бычья сыворотка телят получают от телят в возрасте от трех недель до 12 месяцев.
Сыворотка взрослого крупного рогатого скота получают от коров старше 12 месяцев.
Донорская бычья сыворотка может быть получена от крупного рогатого скота в возрасте 12 месяцев и старше. Крупный рогатый скот-донор выращивается в специальном контролируемом стаде исключительно для донорства крови.

Возраст животного является примечательной характеристикой, поскольку он может влиять на состав крови и, следовательно, сыворотки.

Почему эмбриональная бычья сыворотка?

Хотите знать, что делает фетальная бычья сыворотка и как она используется в исследованиях? В то время как сыворотки других животных (например, лошадиных, кроличьих, козьих, свиных и т. д.) доступны и используются, эмбриональная бычья сыворотка остается наиболее универсально используемой. Фетальная бычья сыворотка содержит небольшое количество гамма-глобулина, более высокие уровни факторов роста и меньшее количество белков комплемента, чем сыворотка как телят, так и взрослых быков.

Это делает FBS идеальной для размножения клеток, а также снижает возможность связывания или лизиса клеток млекопитающих в культуре, рационализируя предпочтение эмбриональной бычьей сыворотке по сравнению с сывороткой новорожденного, донора или взрослой бычьей.
Для чего используется фетальная бычья сыворотка?
В таком случае, вероятно, вы задаетесь вопросом: «Для чего используется фетальная бычья сыворотка? Какой цели это служит?
В конце 1950-х годов Теодор Пак впервые представил использование FBS с целью стимулирования клеточной пролиферации. В течение нескольких десятилетий использование эмбриональной телячьей сыворотки повсеместно использовалось в лабораториях по всему миру. Его популярность по-прежнему основывается на его незаменимости в качестве добавки для культур клеток и тканей.

Исследования, фармацевтика и биотехническое производство полагаются на ценные свойства FBS. Его использование включает, но не ограничивается:
Диагностика животных
Биотехнологические исследования и производство
Клонирование
Криоконсервация
Исследования стволовых клеток
Производство вакцин
90 наиболее часто ищут in vitro клеточной культуры эукариотических клеток. ³ Дополнение питательных сред животной сывороткой в первую очередь способствует:
Стимулированию дифференцировки клеток
Обеспечение гормональными факторами для пролиферации и роста клеток
Обеспечение питательными веществами, микроэлементами, транспортными белками, факторами адгезии и удлинения среда для роста со стабилизирующими и дезинтоксикационными факторами

Как получают эмбриональную бычью сыворотку?
Общая процедура сбора эмбриональной бычьей сыворотки включает следующие этапы:
В качестве побочного продукта мясоперерабатывающей промышленности кровь плода собирают во время сбора на бойнях, где коровы проходят как пред-, так и послеубойный ветеринарный осмотр
Кровь плода крупного рогатого скота собирают у умерших беременных коров в учреждениях, утвержденных правительством
Кровь берется путем пункции сердца у умершего плода в закрытой асептической системе с использованием лучших методов регулирования уровня гемоглобина и эндотоксинов
Кровь охлаждается для стимулирования свертывания
Кровь затем перерабатывается в сырую сыворотку
FBS всегда должен храниться при температуре ≤-10°C до момента предполагаемого использования

Как обрабатывается ФБС?
В то время как процесс сбора эмбриональной бычьей крови прост, тщательная и контролируемая обработка FBS может быть особенно сложной в зависимости от ее предполагаемого использования и требуемого тестирования.
Сырая сыворотка замораживается в асептических контейнерах до дальнейшей обработки.
Сырая сыворотка размораживается.
Предварительная и окончательная стерильная фильтрация через серию мембранных фильтров.
Сыворотка замораживается сразу после фильтрации.
Последним этапом является полное тестирование качества
Хотя поры фильтра могут удалять грибки и бактерии, они не способны уничтожить вирусы. Итак, каждая партия тестируется на вирусы. В зависимости от требований заказчика сыворотка может быть подвергнута гамма-облучению для дезактивации вирусной нагрузки.

Примеры проведенных испытаний включают:
Испытания на эндотоксины
гемоглобин
Тестирование микоплазмы
Осмолалита
Производительность (рост)
Общий белок
9CF клиенты также могут тестировать продукты перед покупкой. По заявке могут быть проведены дополнительные испытания.
В дополнение к гамма-облучению сыворотка может подвергаться нескольким специальным обработкам:
Лечение углем — активированный уголь связывается с липофильными молекулами и поэтому используется для удаления гормонов (например, андрогена, кортизола, эстрадиола, тестостерона и т. д.), которые часто препятствуют работе систем иммуноанализа и процедур исследования инсулина.
Диализированный — удаляет любые молекулы с молекулярной массой менее 10 000, включая антибиотики, аминокислоты, цитокины, глюкозу и гормоны.

Тепловая инактивация— путем помещения ФБС на водяную баню при температуре 56 градусов Цельсия на тридцать минут, ингибиторы дезактивируются. Тем не менее, это не рекомендуется для большинства клеточных культур, поскольку оно может отключить факторы роста и вызвать образование преципитатов.
Low IgG — захватная хроматография может значительно снизить содержание IgG.
Как следует хранить фетальную бычью сыворотку?
Поскольку FBS является биологическим веществом, необходимо соблюдать осторожность и хранить его надлежащим образом, чтобы избежать деградации. Наиболее эффективным способом хранения является хранение сыворотки в замороженном виде.
FBS должен быть:
Хранить при температуре ≤-10 градусов Цельсия
Оттаивать при температуре от 2 до 8 градусов Цельсия
Хранить и транспортировать в стабильных условиях для предотвращения порчи

Кто регулирует ФБС?
Государственные учреждения (DEFRA, USDA, MPI, DAWR и т. д.) устанавливают стандарты побочных продуктов животного происхождения и требования/правила для импорта и экспорта этих продуктов по всему миру.
Однако в некоторых географических регионах существуют различные уровни вирусного риска. Например, FBS, импортируемые из Канады и Новой Зеландии в США, не требуют дополнительных испытаний на безопасность со стороны Министерства сельского хозяйства США. С другой стороны, FBS австралийского происхождения должны быть проверены на наличие двух вирусов, Akabane и Bluetongue. Мексиканские и центральноамериканские FBS также требуют тестирования USDA на безопасность катарального языка при ввозе в США.
Международная ассоциация производителей сывороток (ISIA) была создана в 2006 году для регулирования производства сывороток для животных.
4 ISIA создала стандарты, которые требуют тщательного изучения и проверки качества. Четыре основных направления деятельности:
Образование — для информирования пользователей и производителей сыворотки животных
Регулирование — для помощи в развитии управления отраслью
Стандартизация — для систематизации импорта/экспорта, стандартов и методология тестирования
Прослеживаемость — для улучшения и продвижения Программы прослеживаемости ISIA
Как ISIA реализует свою программу прослеживаемости?
Упомянутая ранее программа прослеживаемости ISIA является не обязательной мерой, а процессом, который компании добровольно проходят для сертификации прослеживаемости сыворотки. ⁵ Утвержденные и обученные аудиторы ISIA будут выявлять и сообщать о несоответствиях от первого до самого последнего этапа производства FBS. Для сертификации требуется просмотр записей.

После завершения аудита квалифицированные предприятия могут получить сертификат, подтверждающий их соответствие стандартам. В конечном итоге ISIA подтверждает, что этикетки и описания продуктов являются точными и аутентичными.
Технология дактилоскопирования
В дополнение к программе ISIA Traceability была внедрена технология дактилоскопирования для повышения прозрачности процесса сбора и распределения сывороток. Разработанная компанией Oritain технология снятия отпечатков пальцев на основе эмбриональной бычьей сыворотки измеряет количество природных элементов, поглощаемых животными, растениями и почвой, а затем создает отпечаток пальца.
Процесс сбора включает три этапа:
Получение образцов продукта.
Образцы анализируются.
Отпечатки пальцев хранятся в базе данных для проверки подлинности.
Этот отпечаток пальца позволяет проверить происхождение каждой сыворотки. Происхождение сыворотки имеет решающее значение, поскольку кровь крупного рогатого скота должна поступать только из стран с утвержденным статусом здоровья животных, а также из лицензированных учреждений. Таким образом, с помощью снятия отпечатков пальцев потребители могут быть уверены, что их продукты являются подлинными и происходят из того географического места, которое рекламируется.
Будущее эмбриональной бычьей сыворотки
За последние годы цена FBS увеличилась более чем на 300% в ответ на растущий спрос и ограниченную доступность. ⁶ Его предложение в значительной степени зависит от факторов окружающей среды и федеральных правил ведения сельского хозяйства.
Несмотря на рост числа претендентов на альтернативы FBS, убедительных результатов, демонстрирующих сопоставимую эффективность, пока не получено.
Тем не менее, гарантируется качество, безопасность, стабильность и соответствие нормативным требованиям продуктов Thermo Fisher Scientific, включая сыворотки. Мы гарантируем, что наши продукты Gibco проходят строгие параметры тестирования, включая сертификацию прослеживаемости ISIA и гарантию происхождения отпечатков пальцев.
Будьте в курсе о эмбриональной бычьей сыворотке и полагайтесь на компанию Thermo Fisher Scientific как на надежный источник FBS.
Ознакомьтесь с нашим обширным ассортиментом продуктов sera
Рекомендации
М. Джонсон. Фетальная бычья сыворотка. Лабоме. 2012. dx.doi.org/10.13070/mm.en.2.117
https://www.serumindustry.org/standardization/serum-definitions/
Пури Г., Чаудхари С. С., Сингх В. К. и Шарма , АК (2015). Влияние эмбриональной бычьей сыворотки и сыворотки эструса буйвола на созревание буйвола (9).0094 Bubalus bubalis ) ооциты in vitro. Ветеринарный мир, 8(2), 143–146. doi:10.14202/vetworld.2015.143-146
https://www.serumindustry.org/about-isia/
https://www.serumindustry.org/traceability/traceability-overview/
Fang, C. Y., Wu , CC, Fang, CL, Chen, WY, & Chen, CL (2017). Долгосрочные сравнительные исследования роста FBS и альтернатив FBS в шести клеточных линиях головы и шеи. PloS один, 12(6), e0178960. doi:10.1371/journal.pone.0178960
Альтернатива FBS в культуре клеток животных. Обзор и перспективы на будущее
1. Leist M., Bremer S., Brundin P., Hescheler J., Kirkeby A., Krause K.H., Pörzgen P., Pucéat M., Шмидт М., Шраттенхольц А., Зак Н.Б., Хенце Х. Биологическая и этическая основа использования эмбриональных стволовых клеток человека для систем тестирования in vitro или клеточной терапии. АЛЬТЕКС. 2008; 25: 163–190. [PubMed] [Google Scholar]
2. Пак Д.-Х., Ева Д.Дж. Регенеративная медицина: достижения в новых методах и технологиях. Мед. науч. Монит. Междунар. Мед. Дж. Эксп. клин. Рез. 2009 г.;15:RA233–R251. [Google Scholar]
3. Yao T., Asayama Y. Среды для культивирования эмбрионов человека перед имплантацией: прошлое, настоящее и будущее. Дж. Мамм. Ова Рез. 2016; 33:17–34. [Google Scholar]
4. Puck T.T., Cieciura Steven J. Генетика соматических клеток млекопитающих∗ iii. Длительное культивирование эуплоидных клеток человека и животных. Дж. Эксп. Мед. 1958; 108: 945–956. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
5. Фишер Гарольд В., Пак Теодор Т. Требования к молекулярному росту одиночных клеток млекопитающих: действие фетуина на прикрепление клеток к стеклу. проц. Натл. акад. науч. США 1958;44:4–10. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [Google Scholar]
6. Маурер Х.Р. На пути к бессывороточной среде с определенным химическим составом для культуры клеток млекопитающих. Аним. Культ Клетки. 1986: 13–31. https://ci.nii.ac.jp/naid/10027323360/en/ [Google Scholar]
7. Brunner D., Frank Jürgen, Appl Helmut, Schöffl Harald. Культура клеток без сыворотки: интерактивная онлайн-база данных без сыворотки. ALTEX-Альт. Аним. Эксп. 2010; 27:53–62. [PubMed] [Google Scholar]
8. Гстраунталер Г., Линдл Т., Ван Дер Валк Дж. Призыв уменьшить или заменить эмбриональную бычью сыворотку в средах для культивирования клеток. Цитотехнология. 2013;65:791–793. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
9. Андерсон Н.Л., Полански М., Пипер Р., Гатлин Т., Тирумалай Р.С., Конрадс Т.П., Веенстра Т.Д., Адкинс Дж.Н., Паундс Дж.Г., Фаган Р., Лобли А. Протеом плазмы человека. Мол. Клетка. Протеомика. 2004; 3: 311–326. [PubMed] [Google Scholar]
10. Андерсон Н.Л., Андерсон Н.Г. Протеом плазмы человека: история, характер и перспективы диагностики. Мол. Клетка. Протеомика. 2002; 1: 845–867. [PubMed] [Google Scholar]
11. Психогиос Н., Хау Д.Д., Пэн Дж., Го А.С., Мандал Р., Буатра С., Синельников И., Кришнамурти Р., Эйснер Р., Гаутам Б., Янг Н., Ся Дж., Нокс С., Донг Э., Хуанг П., Холландер З., Педерсен Т.Л., Смит С.Р., Бамфорт Ф., Грейнер Р., Макманус Б., Ньюман Дж.В., Гудфренд Т., Уишарт Д.С. Метаболом сыворотки человека. PloS Один. 2011;6 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
12. Yao T., Asayama Y. Среды для культивирования клеток животных: история, характеристики и современные проблемы. Воспр. Мед. биол. 2017;16:99–117. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
13. Ван Дер Валк Дж., Меллор Д., Брэндс Р., Фишер Р., Грубер Ф., Гстраунталер Г., Хеллебрекерс Л., Хилльнер Дж., Йонкер Ф.Х., Прието П., Тален М., Бауманс В. Гуманный сбор эмбриональной бычьей сыворотки и возможности для бессывороточных культур клеток и тканей. Токсикол. Витро. 2004; 18:1–12. [PubMed] [Академия Google]
14. Ван дер Валк Дж., Бруннер Д., Де Смет К., Фекс Свеннингсен О., Онеггер П., Кнудсен Л.Е., Линдл Т., Нораберг Дж., Прайс А., Скарино М.Л., Гстраунталер Г. Оптимизация среды для культивирования клеток с определенным химическим составом — замена эмбриональной бычьей сыворотки в методах in vitro для млекопитающих. Токсикол. Витро. 2010; 24:1053–1063. [PubMed] [Google Scholar]
15. Бриндли Д.А., Дэви Н.Л., Калм-Сеймур Э.Дж., Мейсон К., Смит Д.В., Роули Дж.А. Пиковая сыворотка: последствия поставок сыворотки для производства клеточной терапии. Реген. Мед. 2012;7:7–13. [PubMed] [Академия Google]
16. Харрисон Р.Г., Гринман М.Дж., Молл Ф.П., Джексон К.М. Наблюдения за живым развивающимся нервным волокном. Анат. Рек. 1907; 1: 116–128. [Google Scholar]
17. Берроуз М.Т. Культивирование тканей куриного эмбриона вне организма. Варенье. Мед. доц. 1910; 55: 2057–2058. [Google Scholar]
18. Каррел А. Искусственная активация роста соединительной ткани in vitro. Дж. Эксп. Мед. 1913 г., 1 января; 17 (1): 14–19. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
19. Эбелинг А. Х. Десятилетний штамм фибробластов. Дж. Эксп. Мед. 1922; 35: 755–759. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
20. Eagle H. Питательные потребности клеток млекопитающих в культуре тканей. Наука. 1955 г., 16 сентября; 122 (3168): 501–504. [PubMed] [Google Scholar]
21. Waymouth C. Growth, Nutr. Метаб. Культ клеток. Эльзевир; 1972. Создание сред для культивирования тканей; стр. 11–47. [Google Scholar]
22. Райан Дж.А. 2008. Введение в культуру клеток животных. Corning.http://catalog2.corning.com/lifesciences/media/pdf/intro_animal_cell_culture.pdf [Интернет]. Доступная форма: [Дата обращения: 01 мая 2016 г.] [Google Scholar]
23. Программа базы данных 3Rs Центра наук о жизни 3RS в Утрехте. https://fcs-free.org/fcs-%20database
24. Хаяси И., Сато Г.Х. Замена сыворотки гормонами обеспечивает рост клеток в определенной среде. Природа. 1976; 259: 132–134. [PubMed] [Google Scholar]
25. Филипик Б., Шехата М., Тот С., Шварцмайер Дж., Корен С. Новый заменитель сыворотки на основе бычьей глазной жидкости: полезный инструмент для культивирования различных животных клеток in vitro . АЛЬТЕКС Альтерн. Zu Tierexperimenten. 2002;19: 15–20. [PubMed] [Google Scholar]
26. Rathore G., Sood N., Swaminathan R. Первичная культура клеток из жабр и почек рыб с использованием рыбьей сыворотки. Индийский J. Exp. биол. 2001; 39: 936–938. [PubMed] [Google Scholar]
27. Пазос П., Бовери М., Дженнари А., Касадо Дж., Фернандес Ф., Прието П. Культивирование клеток без сыворотки: уроки, полученные с использованием молекул растительного происхождения. АЛЬТЕКС. 2004; 21: 67–72. [PubMed] [Google Scholar]
28. Liu L., Wang J., Duan S., Chen L., Xiang H., Dong Y., Wang W. Систематическая оценка белка серицина в качестве заменителя эмбриональной бычьей сыворотки в культуре клеток. науч. Отчет 2016; 6: 1–10. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
29. Hartung A., Pazos T., Gennari P. Использование среды с добавлением молекул растительного происхождения для культивирования эпителиальных клеток. ALTEX-Альт. Аним. Эксп. 2003; 20: 175–176. [Google Scholar]
30. Челатурай Васанта Н., Раджагопалан К., Селван Кристирай Дж.Д., Суббиаханадар Челадурай К., Ганесан М., Ажагесан А., Раджаян Пушпабай Р., Мохан М., Селван Кристирадж Дж.Р.С. Инактивированная нагреванием целомическая жидкость дождевого червя Perionyx excavatus является возможным альтернативным источником эмбриональной бычьей сыворотки в культуре клеток животных. Биотехнолог. прог. 2019;35:1–6. [PubMed] [Google Scholar]
31. Freshney RI Cult. Аним. Клетки. Американское онкологическое общество; 2005. Бессывороточная среда. [Google Scholar]
32. Бродель С.Е., Папчак С.М. Случай бессывороточных сред. Биофарм Инт. 2003; 1:56–58. [Google Scholar]
33. Webster L., Stanbury R.M., Chignell A.H., Limb G.A. Молекула межклеточной адгезии стекловидного тела 1 при увеите, осложненном отслойкой сетчатки. бр. Дж. Офтальмол. 1998; 82: 438–443. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
34. Миллер Дж.В., Адамис А.П., Шима Д.Т., Д’Амор П.А., Моултон Р.С., О’Рейли М.С., Фолкман Дж., Дворак Х.Ф., Браун Л.Ф., Берс Б., Йео Т.К., Йео К.Т. Фактор роста эндотелия сосудов/фактор проницаемости сосудов во времени и пространстве коррелирует с глазным ангиогенезом в модели приматов. Являюсь. Дж. Патол. 1994; 145: 574–584. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
35. Camiña J.P., Casabiell X.A., Pérez F.R., Lage M., Casanueva F. F. Выделение биоактивного Са2+-мобилизующего сложного липида из стекловидного тела крупного рогатого скота. Биохим. Биофиз. Рез. коммун. 1998;244:696–700. [PubMed] [Google Scholar]
36. Варма В.П., Деви Л., Венна Н.К., Мурти С.Л.Н., Идрис М.М., Гоэл С. Глазная жидкость как замена сыворотке в средах для криоконсервации клеток. PloS Один. 2015; 10:1–17. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
37. Pothana L., Devi L., Venna N.K., Pentakota N., Varma VP, Jose J., Goel S. Замена сыворотки глазной жидкостью для криоконсервации незрелые яички. Криобиология. 2016;73:356–366. [PubMed] [Академия Google]
38. Пауль Дж. Вальтер де Грюйтер ГмбХ и Ко КГ; 2019. Zell-und Gewebekulturen. [Google Scholar]
39. Терада С., Нисимура Т., Сасаки М., Ямада Х., Мики М. Серицин, белок, полученный из шелковичных червей, ускоряет пролиферацию нескольких клеточных линий млекопитающих, включая гибридому. Цитотехнология. 2002; 40:3–12. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
40. Мартинес-Мора К., Мровец А., Гарсия-Вискайно Э.М., Алькарас А., Сенис Дж.Л., Николас Ф.Дж. Фиброин и серицин из шелка Bombyx mori стимулируют миграцию клеток посредством активации и фосфорилирования c-Jun. PloS Один. 2012;7 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
41. Наяк С., Дей Т., Наскар Д., Кунду С.С. Стимулирование остеоинтеграции титановых поверхностей путем покрытия протеином шелка серицином. Биоматериалы. 2013; 34: 2855–2864. [PubMed] [Google Scholar]
42. Цубоучи К., Игараси Ю., Такасу Ю., Ямада Х. Серицин усиливает прикрепление культивируемых фибробластов кожи человека. Бионауч. Биотехнолог. Биохим. 2005; 69: 403–405. [PubMed] [Google Scholar]
43. Minoura N., Aiba S.I., Gotoh Y., Tsukada M., Imai Y. Прикрепление и рост культивируемых фибробластных клеток на матрицах белков шелка. Дж. Биомед. Матер. Рез. 1995;29:1215–1221. [PubMed] [Google Scholar]
44. Арамвит П., Канокпанонт С., Де-Экнамкул В., Камей К., Сричана Т. Влияние серицина с переменным содержанием аминокислот из различных штаммов шелка на производство коллаген и оксид азота. Дж. Биоматер. науч. Полим. Эд. 2009;20:1295–1306. [PubMed] [Google Scholar]
45. Арамвит П., Канокпанонт С., Накфенг Т., Шричана Т. Влияние серицина из различных методов экстракции на жизнеспособность клеток и выработку коллагена. Междунар. Дж. Мол. науч. 2010;11:2200–2211. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
46. Цао Т.Т., Чжан Ю.К. Жизнеспособность и пролиферация L929, опухолевых и гибридомных клеток в культуральной среде, содержащей белок серицин в качестве добавки или заменителя сыворотки. заявл. микробиол. Биотехнолог. 2015;99:7219–7228. [PubMed] [Google Scholar]
47. Такахаси М., Цудзимото К., Ямада Х., Такаги Х., Накамори С. Белок шелка, серицин, защищает от гибели клеток, вызванной острой депривацией сыворотки в культуре клеток насекомых. Биотехнолог. лат. 2003; 25:1805–1809. [PubMed] [Академия Google]
48. Williamson M.B., Fromm H.J. Влияние цистина и метионина на заживление экспериментальных ран. проц. соц. Эксп. биол. Мед. 1952; 80: 623–626. [PubMed] [Google Scholar]
49. Верданова М., Пытлик Р., Калбакова М.Х. Оценка серицина в качестве криопротектора, замещающего фетальную бычью сыворотку, при замораживании мезенхимальных стромальных клеток человека и остеобластоподобных клеток человека. Биоконсерв. Биобанк. 2014;12:99–105. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
50. Вепари С., Каплан Д.Л. Шелк как биоматериал. прог. Полим. науч. 2007;32:991–1007. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
51. Икеда К., Оуми Ю., Огава А., Сасаки М., Ямада Х., Терада С. Клетки и культуры. Культ клеток. 2010: 10–13. [Google Scholar]
52. Ха С.Дж., Ким Б.Г., Ли Ю.А., Ким Ю.Х., Ким Б.Дж., Юнг С.Е., Пан М.Г., Рю Б.Ю. Влияние антиоксидантов и ингибиторов апоптоза на криоконсервацию мышиных половых клеток, обогащенных сперматогониальными стволовыми клетками. PloS Один. 2016; 11:1–16. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [Google Scholar]
53. Burnouf T., Strunk D., Koh MBC, Schallmoser K. Лизат тромбоцитов человека: замена эмбриональной бычьей сыворотки в качестве золотого стандарта для размножения клеток человека? Биоматериалы. 2016;76:371–387. [PubMed] [Академия Google]
54. Semple J.W., Italiano J.E., Freedman J. Тромбоциты и иммунный континуум. Нац. Преподобный Иммунол. 2011; 11: 264–274. [PubMed] [Google Scholar]
55. Rauch C., Feifel E., Amann E.-M., Spötl H.P., Schennach H., Pfaller W., Gstraunthaler G. Альтернативы использованию эмбриональной бычьей сыворотки: человек лизаты тромбоцитов в качестве заменителя сыворотки в средах для культивирования клеток. АЛЬТЕКС-Альтерн. Аним. Эксп. 2011;28:305–316. [PubMed] [Google Scholar]
56. van der Valk J., Bieback K., Buta C., Cochrane B., Dirks W.G., Fu J., Hickman J.J., Hohensee C., Kolar R., Liebsch M. , Пистоллато Ф., Шульц М., Тиме Д., Вебер Т., Вист Дж., Винклер С., Гстраунталер Г. Фетальная бычья сыворотка (ФБС): прошлое – настоящее – будущее. АЛЬТЕКС. 2018;35:99–118. [PubMed] [Google Scholar]
57. Йоханссон Л., Клинт Дж., Холмквист О., Олсон С. Лизат тромбоцитов: замена эмбриональной бычьей сыворотке в культуре клеток животных? Цитотехнология. 2003; 42: 67–74. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
58. Astori G., Amati E., Bambi F., Bernardi M., Chieregato K., Schäfer R., Sella S., Rodeghiero F. Лизат тромбоцитов как заменитель сыворотки животных для расширения ex-vivo мезенхимальных стволовых/стромальных клеток: настоящее и будущее. Стволовые клетки Res. тер. 2016;7:1–8. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
59. Радтке С., Гибель Б., Вагнер В., Хорн П.А. Лизаты тромбоцитов и их роль в клеточной терапии. ИСБТ науч. сер. 2014;9:193–197. [Google Scholar]
60. Canestrari E., Steidinger H.R., McSwain B., Charlebois S.J., Dann C.T. Добавка среды лизата тромбоцитов человека поддерживает лентивирусную трансдукцию и экспансию Т-лимфоцитов человека, сохраняя при этом фенотип памяти. Дж. Иммунол. Рез. 2019;2019 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
61. Троян Кёлле С.Ф., Оливери Р.С., Гловинский П.В., Кирхгоф М., Матиасен А.Б., Эльберг Дж.Дж., Андерсен П.С., Джевецкий К. Т., Фишер-Нильсен А. Объединенный лизат тромбоцитов человека по сравнению с эмбриональной бычьей сывороткой — исследование скорости пролиферации, стабильности хромосом и ангиогенного потенциала стволовых клеток, полученных из жировой ткани человека, предназначенных для клинического использования. Цитотерапия. 2013; 15:1086–109.7. [PubMed] [Google Scholar]
62. Tylek T., Schilling T., Schlegelmilch K., Ries M., Rudert M., Jakob F., Groll J. Лизат тромбоцитов превосходит FCS и сыворотку человека по ко- культура первичных макрофагов человека и чМСК. науч. Отчет 2019; 9: 1–11. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
63. Мохамед Х.Е., Аскер М.Е., Котб Н.С., Эль Хабаб А.М. Эффективность лизата тромбоцитов человека, стабильность и оптимальная концентрация гепарина, необходимые в культуре клеток млекопитающих. Кровь рез. 2020;55:35–43. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
64. Ветвицка В. 1994. Иммунология кольчатых червей. [Google Scholar]
65. Патил С.Р., Бирадар П.М. Целомическая жидкость дождевых червей: добыча и значение. Междунар. Дж. Адв. науч. Рез. 2017; 2:1–4. [Google Scholar]
66. Griffith C.M., Williams P.B., Tinoco L.W., Dinges M.M., Wang Y., Larive C.K. Метаболическое профилирование 1H-ЯМР целомической жидкости, целомоцитов и тканей дождевого червя ( Eisenia fetida ): идентификация нового метаболита — малилглутамата. J. Proteome Res. 2017;16:3407–3418. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
67. Камемото Ф.И., Сполдинг А.Е., Кейстер С.М. Ионный баланс в крови и целомической жидкости дождевых червей. биол. Бык. 1962 г., апрель; 122 (2): 228–231. [Google Scholar]
68. Субраманиан Э.Р., Судалаймани Д.К., Селван Кристирадж Дж.Р.С., Рамамурти К., Гопи Дейзи Н., Селван Кристирадж Дж.Д., Ренганатан К., Кришнан С., Сивасубраманиам С. Исследования органогенеза во время регенерации у дождевых червей , Eudrilus eugeniae , в поддержку симбиотической ассоциации с Bacillus endophyticus. Турецкий J. Biol. 2017;41:113–126. [Академия Google]
69. Плитыч Б., Бигай Дж., Фалнёвски А., Морган А.Дж. Неожиданные результаты и открытые вопросы экспериментов по регенерации люмбрицид. Инвертебр. Выжить. Дж. 2016; 13:315–325. [Google Scholar]
70. Плытыч Б., Хома Ю., Козиол Б., Розановска М., Морган А.Ю. Содержание рибофлавина в аутофлуоресцентных целомоцитах дождевых червей видоспецифично. Фолиа гистохим. Цитобиол. 2006; 44: 275–280. [PubMed] [Google Scholar]
71. Морган Дж.Ф., Мортон Х.Дж., Паркер Р.К. Питание животных клеток в культуре тканей. I. Начальные исследования на синтетической среде. проц. соц. Эксп. биол. Мед. 1950 января; 73 (1): 1–8. [PubMed] [Google Scholar]
72. Накано Э., Муштак С., Хит П.Р., Ли Э.С., Бери Дж.П., Райли С.А., Пауэрс Х.Дж., Корф Б.М. Истощение рибофлавина нарушает пролиферацию клеток в двенадцатиперстной кишке взрослого человека: идентификация потенциальных эффекторов. Копать землю. Дис. науч. 2011;56:1007–1019. [PubMed] [Google Scholar]
73. Даниелян К.Э. Подкомпоненты комплекса витаминов группы В регулируют рост и развитие клеток головного мозга человека. Являюсь. Дж. Биомед. Рез. 2013; 1:28–34. [Академия Google]
74. Hirano K., Namihira M. Приток FAD усиливает нейрональную дифференцировку нервных стволовых клеток человека, способствуя ядерной локализации LSD1. Открытая биография ФЭБС. 2017; 7: 1932–1942. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [Google Scholar]
75. Кашьяп С., Капур Н., Кале Р.Д. Coscinium fenestratum: каллус и суспензионная клеточная культура исчезающего лекарственного растения с использованием экстракта биогумуса и целомической жидкости в качестве среды для культивирования тканей растений . Являюсь. Дж. Растениевод. 2016;7(6):899. [Академия Google]
76. Войдани А., Штейн Э.А., Альфред Л.Дж., Купер Э.Л. Митогенный эффект дождевого червя (Lumbricus terrestris) целомической жидкости на лимфоциты мыши и человека. Иммунобиология. 1984; 166: 157–167. [PubMed] [Google Scholar]
77. Hanušová R. , Bilej M., Brys L., De-Baetselier P., Beschin A. Идентификация целомического митогенного фактора у дождевых червей Eisenia foetida. Иммунол. лат. 1999; 65: 203–211. [PubMed] [Google Scholar]
78. Чжао Дж., Ци С.П., У Дж., Ли Л., Хе Р.К. Фибринолитический фермент дождевых червей. Стад. Нац. Произв. хим. 2005; 30: 825–847. [Академия Google]
79. Fazzina R., Iudicone P., Mariotti A., Fioravanti D., Procoli A., Cicchetti E., Scambia G., Bonanno G., Pierelli L. Культура клеточных линий человека инактивированным патогеном человеком лизат тромбоцитов. Цитотехнология. 2016;68:1185–1195. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
80. Бибак К., Фернандес-Муньос Б., Пати С., Шефер Р. Пробелы в знаниях о лизате тромбоцитов человека в качестве добавки клеточной культуры для клеточной терапии: совместная публикация AABB и Международного общества клеточной и генной терапии. Цитотерапия. 2019;21:911–924. [PubMed] [Google Scholar]
81. Сетулакшми К., Лакшми Р. Антибактериальная активность целомической жидкости местных дождевых червей в отношении болезнетворных микроорганизмов. Азиатский Дж. Биол. 2018;5:1–7. [Google Scholar]
82. Раджеш С., Раджаманиккам К., Надана Г., Вадиву Р. Целомическая жидкость дождевого червя, Eudrilus eugeniae , ингибирует рост грибковых гиф, in vitro. Междунар. Дж. Инж. Доп. Технол. 2019; 9: 792–796. [Google Scholar]
83. John S.A., Packialakshmi N., Sundhararajan A. Исследование клеточной активности в целомической жидкости дождевого червя ( Perionyx excavatus Perrier) Asian J. Microbiol. Биотехнолог. Окружающая среда. науч. 2009; 11: 335–338. [Google Scholar]
84. Гейтс Г.Э. Бирманские дождевые черви: введение в систематику и биологию мегадрильных олигохет с особым упором на Юго-Восточную Азию. Транс. Являюсь. Филос. соц. 1972; 62: 1–326. [Google Scholar]
85. Рейнеке А.Дж., Вильджоен С.А., Саайман Р.Дж. Пригодность Eudrilus eugeniae, Perionyx excavatus и Eisenia fetida (Oligochaeta) для вермикомпостирования в южной части Африки с точки зрения их температурных требований. Почвенная биол. Биохим. 1992;24:1295–1307. [Google Scholar]
86. Чан Р.К., Лю П., Лью Д.-Х., Ибрагим С.И., Срей Р., Валери К.Р., Хехтман Х.Б., Оргилл Д.П. Жидкие консервированные тромбоциты с истекшим сроком годности сохраняют пролиферативную активность1. Дж. Сург. Рез. 2005; 126:55–58. [PubMed] [Google Scholar]
87. Фолмсби М., Ховард Г., Макалистер М. Влияние питательных сред на размер клеток микоплазмы и их удаление фильтрацией. Биопрепараты. 2010; 38: 214–217. [PubMed] [Google Scholar]
88. Организация W.H. Руководство по процедурам инактивации и удаления вирусов, предназначенным для обеспечения вирусной безопасности продуктов плазмы крови человека. ВОЗ Тех. Респ. Сер. 2004;924:150–224. [Google Scholar]
89. Клейн Х. Г. Технология инактивации патогенов: очистка кровоснабжения. Дж. Стажер. Мед. 2005; 257: 224–237. [PubMed] [Google Scholar]
90. Shih DT, Chen J., Chen W., Kuo Y., Su C., Burnouf T. Экспансия мезенхимальных стромальных предшественников жировой ткани в бессывороточной среде с добавлением вирусно-инактивированной аллогенной лизат тромбоцитов человека. Переливание. 2011;51:770–778. [PubMed] [Google Scholar]
91. Hemeda H., Giebel B., Wagner W. Оценка лизата тромбоцитов человека по сравнению с эмбриональной бычьей сывороткой для культуры мезенхимальных стромальных клеток. Цитотерапия. 2014;16:170–180. [PubMed] [Академия Google]
92. Oeller M., Laner-plamberger S., Krisch L., Rohde E., Strunk D., Schallmoser K. Лизат тромбоцитов человека для производства клеток в соответствии с надлежащей производственной практикой. Междунар. Дж. Мол. науч. 2021;22 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
93. Reports Reportsn. 2016. Рынок клеточных культур по оборудованию (биореактор, сосуды для культивирования (многолуночные чашки, чашки Петри)), расходным материалам (FBS, ABS, среды, реагенты), применению (терапия, стволовые клетки), конечным пользователям (фармацевтика и биотехнология, исследования) — Прогноз до 2020 г. http://www.reportsnreports.com/market-research/biotechnology/ Доступно по адресу: [Google Scholar]
94. Карниели О., Фриднер О.М., Алликсон Дж.Г., Чжан Н., Юнг С., Фиорентини Д., Абрахам Э., Икер С.С., Йонг Т.К., Чан А., Гриффитс С., Когда А.К., О С. , Карниели О. Консенсусное введение в заменители сыворотки и бессывороточные среды для клеточной терапии. Цитотерапия. 2017;19:155–169. [PubMed] [Google Scholar]
95. Gstraunthaler G. Альтернативы использованию эмбриональной бычьей сыворотки: культура клеток без сыворотки. АЛЬТЕКС Альтерн. Zu Tierexperimenten. 2003; 20: 275–281. [PubMed] [Академия Google]
96. Бейкер М. Воспроизводимость: уважайте свои клетки! Природа. 2016; 537: 433–435. [PubMed] [Google Scholar]
97. Гстраунталер Г., Линдл Т., Ван Дер Валк Дж. Серьезный случай мошеннического смешивания эмбриональной бычьей сыворотки усиливает аргументы в пользу применения бессывороточных культур клеток и тканей. АТЛА Альт. лаборатория Аним. 2014;42:207–209. [PubMed] [Google Scholar]
98. RMBIO . 2016. Fetal Bovine Serum: предложение и спрос на FBS в США. https://www. rmbio.com/fetal-bovine-serum-supply-and-demand-for-us-fbs [Google Scholar]
99. Chou M.L., Bailey A., Avory T., Tanimoto J., Burnouf T. Удаление приона трансмиссивной губчатой энцефалопатии из больших объемов культуральной среды с добавлением эмбриональной бычьей сыворотки с использованием анионообменной мембранной хроматографии с полыми волокнами. PloS Один. 2015; 10:1–15. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
100. Kirikae T., Tamura H., Hashizume M., Kirikae F., Uemura Y., Tanaka S., Yokochi T., Nakano M. Заражение эндотоксинами в эмбриональная бычья сыворотка и ее влияние на продукцию фактора некроза опухоли макрофагоподобными клетками J774. 1 культивируют в присутствии сыворотки. Междунар. J. Иммунофармакол. 1997 1 мая; 19 (5): 255–262. [PubMed] [Google Scholar]
101. Hawkes P.W. Фетальная бычья сыворотка: географическое происхождение и нормативное значение вирусного заражения. Биоресурс. Биопроцесс. 2015;2 [Google Scholar]
102. Jochems C. E.A., Van der Valk J.B.F., Stafleu F.R., Baumans V. Использование эмбриональной бычьей сыворотки: этическая или научная проблема? АТЛА Альт. лаборатория Аним. 2002; 30: 219–227. [PubMed] [Google Scholar]
103. Clavey V., Copin C., Mariotte M.C., Baugé E., Chinetti G., Fruchart J., Fruchart J.C., Dallongeville J., Staels B. Условия клеточной культуры определяют аполипопротеин CIII секреция и регуляция фибратами в клетках гепатомы человека hepG2. Клетка. Физиол. Биохим. 1999;9:139–149. [PubMed] [Google Scholar]
104. Groothuis F.A., Heringa M.B., Nicol B., Hermens J.L.M., Blaauboer B.J., Kramer N.I. Рассмотрение метрики дозы в анализах in vitro для улучшения количественной экстраполяции дозы in vitro-in vivo. Токсикология. 2015; 332:30–40. [PubMed] [Google Scholar]
105. Крамер Н.И., Херменс Дж.Л.М., Ширмер К. Влияние способов действия и физико-химических свойств химических веществ на корреляцию между данными in vitro и острой токсичностью для рыб. Токсикол. Витро. 2009 г.;23:1372–1379. [PubMed] [Google Scholar]
106. Taylor R.E., Gregg CJ, Padler-Karavani V., Ghaderi D., Yu H., Huang S., Sorensen R.U., Chen X., Inostroza J., Nizet V., Варки А. Новый механизм образования человеческих ксено-аутоантител против нечеловеческой сиаловой кислоты N-гликолилнейраминовой кислоты. Дж. Эксп. Мед. 2010; 207:1637–1646. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
107. Мартин М.Дж., Муотри А., Гейдж Ф., Варки А. Эмбриональные стволовые клетки человека экспрессируют иммуногенную нечеловеческую сиаловую кислоту. Нац. Мед. 2005; 11: 228–232. [PubMed] [Академия Google]
108. Билей М., Брис Л., Бещин А., Лукас Р., Веркаутерен Э., Ханушова Р., Де Бетселье П. Идентификация цитолитического белка в целомической жидкости дождевых червей Eisenia foetida. Иммунол. лат. 1995; 45: 123–128. [PubMed] [Google Scholar]
109. Milochau A., Lassègues M., Valembois P. Очистка, характеристика и активность двух гемолитических и антибактериальных белков из целомической жидкости кольчатых червей Eisenia fetida andrei. Биохим. Биофиз. Acta Protein Struct. Мол. фермент. 1997;1337:123–132. [PubMed] [Google Scholar]
110. Фиолка М.Ю., Чаплевская П., Макур К., Бухвальд Т., Кутковская Ю., Падух Р., Качиньский З., Выдрых Ю., Урбаник-Сыпневская Т. Anti-Candida albicans действие белково-углеводной фракции, полученной из целомической жидкости дождевого червя Dendrobaena veneta. PloS Один. 2019; 14:1–30. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
111. Шанский Ю.Д., Сергеева Н.С., Свиридова И.К., Киракозов М.С., Кирсанова В.А., Ахмедова С.А., Антохин А.И., Чиссов В.И. Лизат тромбоцитов человека как перспективная ростостимулирующая добавка для культивирования стволовых и других типов клеток. Бык. Эксп. биол. Мед. 2013; 156: 146–151. [PubMed] [Академия Google]
112. Valembois P., Seymour J., Roch P. Доказательства и клеточная локализация окислительной активности в целомической жидкости дождевого червя Eisenia fetida andrei . Дж. Инвертебр. Патол. 1991; 57: 177–183. [Google Scholar]
113. Уэда М., Нода К., Наказава М., Миятаке К., Оки С., Сакагути М., Иноуэ К. Новый вирусный белок против растений из целомической жидкости дождевого червя Eisenia foetida : очистка, характеристика и идентификация сериновой протеазы. Комп. Биохим. Физиол. Б Биохим. Мол. биол. 2008; 151:381–385. [PubMed] [Академия Google]
114. Надана Г.Р.В., Раджеш С., Кавита А., Сивакумар П., Шридеви Г., Паланичелвам К. Индукция механизма роста и защиты растений риса от грибковых патогенов экологически чистой целомической жидкостью дождевого червя. Окружающая среда. Технол. иннов. 2020;19:101011. [Google Scholar]
115. Грдиша М., Попович М., Хрженяк Т. Стимуляция синтеза фактора роста в кожных ранах с помощью тканевого экстракта (G-90) дождевого червя Eissenia foetida. Клеточная биохимия. Функц. 2004; 22: 373–378. [PubMed] [Академия Google]
116. Ишицука Р., Сато С.Б., Кобаяши Т. Визуализация липидных рафтов. Дж. Биохим. 2005; 137: 249–254. [PubMed] [Google Scholar]
117. Ломанн М.